martes, 13 de diciembre de 2016

23.- Preparación de medios de cultivo


  


  


                                 

PROTOCOLO PARA LA PREPARACIÓN DE UN MEDIO DE CULTIVO PARA MEDIO SÓLIDO

MATERIAL:
Papel de filtro
Vidrio de reloj
Cucharilla de metal
Balanza
Vaso de precipitados
Varilla agitadora
Erlenmeyer de 500 mL
Pipeta Pasteur
Probeta de 250 mL
Mechero
Autoclave
Algodón graso
Cinta adhesiva
Papel aluminio
Bolsas de autoclave
Agua destilada
Muestra: Agar Estándar
Agitador magnético con imán (o cazo y placa calefactora)
Pinzas metálicas
Placas Petri
Embudo

PROCEDIMIENTO:
1.- Seguimos el protocolo del Agar Estándar (Suspender 23,5 g en 1 L de agua destilada. Calentar y agitar hasta disolución total. Distribuir y esterilizar a 121ºC durante 15 minutos).

2.- Hacemos los cálculos para 300 mL.

        Si 1000 mL _____ 23,5 g
               300 mL _____   x x= 7,05 g tenemos que pesar

3.- En la balanza, taramos el vidrio de reloj y pesamos 7,05 g de Agar estándar con ayuda de una cucharilla de metal.

4.- Se llena la probeta de 250 mL con agua destilada y se enrasa con una pipeta Pasteur.
Se vacían los 250 mL de agua destilada en un Erlenmeyer de 500 mL. Seguidamente, echamos los 7,05 g de agar estándar en el Erlenmeyer con ayuda de un embudo (o con el vidrio de reloj llevando cuidado de no derramarlo) y volvemos a llenar la probeta con los 50 mL restantes de agua destilada y enrasamos con pipeta Pasteur. Añadimos esa agua destilada al matraz (para completar los 300 mL).

5.- Se coloca un cazo con agua en una placa calefactora (o un agitador magnético con imán) para esterilizar el medio y calentar al baño María el Erlenmeyer con el medio de cultivo hasta homogeneizar (ayudarnos con una varilla agitadora de vez en cuando).

6.- Una vez homogéneo, se apaga la placa calefactora (o el agitador magnético, quitando el imán con unas pinzas de metal) y se coge el Erlenmeyer con unos guantes hasta la mesa de trabajo.

7.- Colocar en el cuello del matraz algodón graso. Tapar con papel de aluminio y cinta adhesiva, y meter en una bolsa de autoclave. Llevar al autoclave a 121ºC durante 15 minutos para esterilizar.

8.- Una vez acabado el autoclavado, llevamos el medio de cultivo a la mesa de trabajo y encendemos el mechero poniéndolo en medio. Vamos cogiendo placas de Petri en las que dispensamos el medio (agitándolas suavemente horizontalmente). Se dejan semiabiertas en la proximidad del mechero.

9.- Cuando se ha evaporado el agua, se cierran, se rotulan (o identifican) y se colocan en posición invertida, guardándolas en la nevera para un posterior uso metidas en una bolsa de autoclave.


 Pesada del agar

Trasvase del agar polvo a la probeta

Trasvase del agar polvo a la probeta

 Agar disuelto en un Erlenmeyer

 Disolución del agar en la placa calefactora y agitación con un imán

 Agar disuelto y placa Petri

Agar disuelto y placa Petri abierta

Detalle del algodón parafinado para que no se contamine el agar

 Emplacado del agar para el cultivo microbiano


Preparación de medios de cultivo


No se dejó reposar el medio de cultivo y no ha conseguido solidificar.

Se vuelve a  preparar de nuevo el medio de cultivo, pero esta vez se esteriliza en el autoclave.

Esterilización del medio de cultivo en el autoclave

Preparación de los parámetros y arranque del autoclave


Medio de cultivo autoclavado (esterilizado)

Medio de cultivo esterilizado listo para emplacar

22.- Ultrasonidos digital


Los ultrasonidos se utilizan para soltar proteínas y otros componentes biológicos de elementos inorgánicos como utensilios, vasos y diferente material de laboratorio. 

 Ultrasonidos digital Technoflux CD-4830



Manual de usuario del Ultrasonidos Digital Technoflux CD-4830



miércoles, 30 de noviembre de 2016

21.- Autoclave

El autoclave es un aparato que se emplea para obtener materiales estériles (que deben resistir altas temperaturas) y para esterilizar material desechable contaminado previamente a su eliminación. En este caso trabajamos con el autoclave RAYPA STERICLAV-75.

El aparato genera calor húmedo, en forma de vapor de agua a presión, y la esterilización se consigue a través del mecanismo de la coagulación de las proteínas, destruyendo así todo tipo de microorganismos, incluyendo los virus y las esporas.


Muestra de agua de peptona para esterilizar

Autoclave en funcionamiento

Habitualmente, el autoclave consta de los siguientes elementos:
  • Fuente de calor (eléctrica o de gas).
  • Interruptor general que enciende y apaga el aparato.
  • Volante que permite la apertura y cierre de la tapa.
  • Depósito con resistencia eléctrica en el fondo.
  • Rejilla perforada que se sitúa a la mitad del depósito.
  • Cestillo para poner el material y que se sitúa encima de la rejilla.
  • Manómetro indicador de la presión interna y termómetro que indica la temperatura.
  • Llave de desvaporización o purga.
  • Válvula de vapor o presión y válvula de seguridad.


Por otro lado, a la hora de poner en marcha el autoclave es necesario seguir estos pasos:
  • Abrir la tapa girando el volante de cierre y desplazarla con el brazo.
  • Llenar el depósito con agua destilada hasta la señal por debajo de la rejilla perforada.
  • Poner el material encima de la rejilla o en un cestillo, de forma que queden espacios entre los materiales para que circule correctamente el vapor de agua.
  • No taponar el orificio superior del depósito por donde sale el vapor de agua para esterilizar los materiales.
  • Desplazar la tapa para que cierre el depósito hasta el tope y girar el volante de cierre para apretarla bien.
  • Conectar el autoclave a la corriente eléctrica y accionar el interruptor general.
  • El autoclave irá aumentando la temperatura y empezará a producir vapor de agua, que desplaza al aire. Una vez purgado el aire del interior, se cierra la llave de purga y la temperatura que se alcanza en ese momento es de 100ºC, momento en el que la presión comienza a subir hasta 1 atmósfera y la veremos indicada en el manómetro.
  • Cuando se alcanzan la temperatura y presión deseadas es cuando comienza el tiempo de esterilización, durante el cual se eliminan todos los microorganismos, incluidos virus y esporas.
  • Finalmente, cuando termina el tiempo de esterilización, se desconecta –de forma automática o bien manual–, con el interruptor, pero no se abrirá hasta que el manómetro indique 0 de presión y  se haya enfriado. Abrir la llave de desvaporización o de purga ayudará a que el vapor salga más rápido y descienda la presión.


Este sistema de esterilización tiene una serie de ventajas y desventajas. Así, entre las ventajas están que es la forma más rápida de esterilizar, no es tóxica, esteriliza gran variedad de materiales (vidrio, metal no oxidable, porcelana, goma y tela) y es económica.

Y entre las desventajas destaca el hecho de que hay materiales que no se pueden esterilizar con autoclave, como el plástico, sustancias insolubles en agua y material metálico oxidable, además de que solo esteriliza en superficie y no en profundidad.

Las condiciones idóneas de esterilización pueden ser las siguientes:
  • 120ºC y 1 atmósfera de presión, 20 min.
  • 121ºC y 1 atmósfera de presión, 15 min.
  • 134ºC y 2 atmósferas de presión, 10 min.
  • 144ºC y 3 atmósferas de presión, 4 min.

Tal como se puede observar, a mayor presión, la temperatura que se alcanza es mayor y el tiempo de esterilización que se requiere es menor.




Manual del autoclave RAYPA STERICLAV-75

martes, 22 de noviembre de 2016

20.- Ascomicetos al microscopio óptico

Otidea alutacea y Aleuria aurantia para determinar

Otidea alutacea


Otidea alutacea vista al microscopio óptico con objetivo de x40, se observan las ascas y las esporas para su determinación

Otidea alutacea vista al microscopio óptico con 40 x, teñida con azul de metileno


Aleuria aurantia

Aleuria aurantia vista al microscopio óptico con objetivo de x40, se observan las ascas y las esporas para su determinación

Aleuria aurantia vista al microscopio óptico con objetivo de x40, teñida con azul de metileno

El colorante utilizado es azul de metileno

viernes, 18 de noviembre de 2016

19.- Bacterias G+ y G- y endosporas

Endosporas

Clasificación de endosporas


Clasificación de Bacterias


Staphylococcus aureus

Staphylococcus aureus en placas de siembra con agar sangre

Imagen aumentada de Staphylococcus aureus en placas de siembra con agar sangre


Clostridium botulinum

Clostridium botulinum en botes de conserva

Bote de conserva hinchado debido a Clostridium botulinum

Espora de Clostridium botulinum en el lactante


 Penicillium roqueforti permite que se elabore el queso de roquefort

Penicillium roqueforti


Aspergillus penicillioides

martes, 15 de noviembre de 2016

18.- Mix de varios: polen, trompeta de la muerte


Granos de polen visto al estereoscopio.

Craterellus cornucopioides - "trompeta de la muerte" desecado

Craterellus cornucopioides - "trompeta de la muerte" en fresco